ELISA樣本的怎么收集？

關于ELISA樣本的收集！

一般來說，由于ELISA實驗只能檢測可溶性蛋白質的含量，因此要求樣本應清晰透明并離心除去沉淀物或懸浮物質。為確保實驗的準確性， -20℃或-80℃保存的樣本應在1-6個月內完成檢測，4℃保存的樣本在一周內完成檢測。此外，樣本中不能含有會抑制HRP活性的NaN3，否則會造成假陰性結果。

可用于ELISA實驗的樣本一般有血清、血漿、尿液、細胞培養上清以及組織勻漿等。不同樣本類型的預處理方法也不同。適當的樣本預處理是確保ELISA實驗正確性和準確性的第一步。這里，我們將介紹幾種不同樣本類型的處理方法。

一、液體樣本

液體樣本處理原則：所有的液體樣本，用無菌管收集，2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉/分）

1、血清：血清是ELISA實驗常用的樣本，其預處也十分簡單。使用無熱原無內毒素的試管或離心管采集血液樣本，，將試管或離心管在室內溫度下放置自然凝固（視室溫環境10分鐘到2小時不等）或4℃過夜，分離出血清，（建議傾斜試管或離心管以擴大液面的橫截面，使血清能更大程度的分離出來，），2-6℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉/分），仔細收集上清，立即進行測定，建議在-20℃或-80℃下將收集的血清分裝保存，避免反復凍融，保存過程中如出現沉淀，應再次離心。

注意事項：在收集血液樣本的過程中應避免溶血，因為紅細胞在溶解時會釋放具有過氧化物酶活性的物質，這種情況下，ELISA實驗中將會出現非特異性顯色反應，導致檢測結果不準確，出現假陽性結果。另外，樣本還應避免細菌污染，因為細菌可能含有內源性HRP，也會導致檢測結果不準確。

2、血漿：應根據標本的要求選擇EDTA、肝素鈉、枸櫞酸納或檸檬酸鈉作為抗凝劑，使用含抗凝劑的采血管或離心管采集血液樣本，采集后30分鐘內，混合10-20分鐘后，2-6℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉/分），仔細收集上清液（血漿），建議在-20℃或-80℃下將收集的血清分裝保存，避免反復凍融。樣本應避免溶血或高血脂。保存過程中如有沉淀形成，應該再次離心。

注意事項：檢測前請仔細閱讀ELISA試劑盒說明書，查看該試劑盒針對抗凝劑是否有特殊要求。

3、尿液：用無菌管收集，2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉/分）。仔細收集上清，保存過程中如有沉淀形成，應再次離心。

4、細胞培養上清：檢測分泌性的成份時，用無菌管收集。將細胞培養上清液吸入離心管中并以2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉/分），除去細胞碎片和雜質，收集上清液備用，樣本保存在-20℃或-80℃，避免反復凍融，保存過程中如有沉淀形成，應再次離心。

5、腦脊液：用無菌管收集，2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉/分），仔細收集上清，保存過程中如有沉淀形成，應再次離心。(（采集大鼠腦脊液）的方法：采集腦脊液時，用濕紗布擦試大鼠頸背部皮膚，剪去背毛暴露皮膚。兩耳連線剪一橫切口(1. 5cm左右)，在其中點向尾側沿皮下剪開2cm，將皮分離兩側，擴大視野。緊貼大鼠頭骨依次逐層剪切各肌層，并斷端依次拉向尾側擴大視野。注意，有出血時用干紗布按壓止血，保持術口清晰。接近頸后黃韌帶時，小心地用7號注射針頭分離附蓋的肌肉，暴露寰枕膜。用1ml注射器(針頭用止血鉗使針尖與針體成150度鈍角)，針斜面向上，針近水平刺入蛛網膜下腔，固定針體，緩慢抽取腦脊液，一般采集量為100-200微升。)

6、唾液：用無菌管收集，2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉/分），仔細收集上清，保存過程中如有沉淀形成，應再次離心。

二、固體樣本

固體樣本處理原則：稱取1g的固體樣本，用9g的合適緩沖液溶解，分泌蛋白可以直接離心取上清檢測，細胞內的蛋白，要先收集細胞，再用合適方法破碎，離心取上清測試。

1、組織標本：切割標本后，稱取1g組織，加入9g的pH7.2-7.4左右的PBS，用手工或勻漿器將標本勻漿充分。離心20分鐘左右（2000-3000轉/分），仔細收集上清。分裝一份待檢測，其余冷凍備用，保存過程中如有沉淀形成，應再次離心。對于植物組織，不好勻漿的話，就在液氮中充分研磨。

2、細胞內蛋白樣本

許多待測蛋白不是分泌蛋白，而是存在于細胞內的蛋白，這個時候，要先收集細胞，洗滌干凈，再破碎細胞，離心取上清。

（1）培養的細胞

A、動物細胞：用PH7.2-7.4的PBS稀釋細胞懸液，使細胞濃度達到100萬/ml左右。通過反復凍融（如果反復凍融，破碎效果不好，就采用超聲波破碎），以使細胞破壞并放出細胞內成份。2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉/分），仔細收集上清，保存過程中如有沉淀形成，應再次離心。

B、植物細胞：用PH7.2-7.4的PBS稀釋細胞懸液，使細胞濃度達到100萬/ml左右，置于冰盒上，用超聲破碎儀，設置破碎2s，冷卻30s的方式，充分破碎細胞，以使細胞破壞并放出細胞內成份。2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉/分），仔細收集上清，保存過程中如有沉淀形成，應再次離心。

（2）組織的細胞

切割標本后，稱取1g組織，加入9g的pH7.2-7.4左右的PBS，用手工或勻漿器將標本勻漿充分。2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉/分），去除上清，再用pH7.2-7.4左右的PBS小心洗滌沉淀的細胞三遍。再用上述的細胞破碎方法破碎細胞。

細胞反復凍融方法

1） 吸出培養板中的培養基，用胰蛋白酶消化細胞，然后加入適量的培養基將培養板上的細胞沖洗干凈。懸浮細胞可以省略該步驟。

2） 將細胞懸浮液收集到離心管中，以1000×g離心10分鐘，然后吸去培養基，用預冷PBS洗滌細胞3次。

3） 加入適量的預冷PBS（建議在使用前立即加入蛋白酶抑制劑）重懸細胞。在6孔培養板中，每個孔需要150-250μL的PBS來重懸細胞。

4） 使樣本在-20℃或-80℃條件和室溫條件下反復凍融，重復凍融過程數次，直至細胞裂解。也可以使用超聲波細胞破碎器超聲處理懸浮液來裂解細胞。

5） 4℃下以10,000×g離心10分鐘，去除細胞碎片，收集上清液， -20℃或-80℃保存，避免反復凍融。

3、土壤：稱取1g土壤，加入9g的pH7.2-7.4左右的PBS，用手工將標本充分混勻。2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉/分），仔細收集上清。分裝一份待檢測，其余冷凍備用，保存過程中如有沉淀形成，應再次離心。如果是測分泌蛋白，直接取上清檢測，測試細胞內蛋白，要破碎細胞。

三、植物

1、標本的精采集及保存

取0.1g（誤差±3%以內）新鮮植物組織樣本，在液氮中充分研磨；加入1ml的提取液（80%甲醇）, 置于-20℃過夜；于4℃，8000rpm，離心1小時，取上清；上清液過C-18固相萃取柱。具體步驟是： 80%甲醇（1ml）平衡柱→上樣→收集樣品→移開樣品后用100%甲醇（5ml）洗柱→100%乙mi（5ml）洗柱→100%甲醇（5ml）洗柱→循環。過柱后的樣本真空干燥或氮氣吹干，保存備用；上樣前加入pH7.4 PBS緩沖液（1ml定容）。混勻后室溫放置30分鐘，然后4℃離心（8000rpm，15分鐘），取上清并暫時保存于4℃待用。

2、植物標本中相關酶或蛋白的測定：（粗提取）

新鮮植物組織請在液氮中充分研磨；加入樣品體積9倍的提取液（pH 7.4 PBS緩沖液）,請于4℃，8000rpm，離心30分鐘，取上清并暫時保存于4℃待用。